摘要：对米曲霉（Aspergillus oryaze）GN-2菌株产中性蛋白酶固体发酵的条件进行优化。单因素试验结果表明，米曲霉的固体适宜发酵条件为发酵原料麸皮∶豆粉为4∶1（质量比，下同），培养时间60 h，培养温度25 ℃，培养基加水量10 mL，接种量1×106个/mL孢子悬液2.0 mL，培养基起始pH 6.0，0.02%（NH4）2SO4溶液1 mL。正交试验结果表明，在温度25 ℃、加水量20 mL、麸皮∶黄豆粉为4∶1、培养时间72 h的条件下酶活力最高，达1 016.9 U/g。

 

　　关键词：米曲霉（Aspergillus oryaze）；中性蛋白酶；产酶条件

 

　　中图分类号：TQ925；Q93-33 文献标识码：A 文章编号：0439-8114（2014）07-1637-04

 

　　Optimizing the Solid Fermentation Conditions of Neutral Protease from

 

　　Aspergillus oryzae GN-2 Strain

 

　　HUANG Yan，JU Lu-ning

 

　　（Minbei Vocational and Technical College， Nanping 353000，Fujian，China）

 

　　Abstract： The optimal solid fermentation conditions of neutral protease from Aspergillus oryzae GN-2 strain was studied. The results of single factor test showed that the highest neutral protease activity was obtained under the conditions of wheat bran and soybean powder addition ratio 4∶1， fermentation time 60 h，temperature 30 ℃，water addition 10 mL， inoculum amount 2.0 mL 1×106 spores/mL spore suspension， the initial medium pH 6.0，0.02%（NH4）2SO4 1 mL. The results of orthogonal experiment showed that the highest neutral protease activity was obtained when the solid fermentation was carried out at 25 ℃ for 72 h， water addition 20 mL and the addition ratio of wheat bran and soybean powder 4∶1， with the highest neutral protease activity of 1 016.9 U/g.

 

　　Key words： Aspergillus oryzae； neutral protease； enzyme production conditions

 

　　中性蛋白酶是指最适作用pH介于6.0～7.5的一类蛋白酶，能催化蛋白质肽键水解。它是最早发现并广泛应用于工业生产的蛋白酶制剂，被广泛应用于皮革脱毛、饲料加工、畜禽血液蛋白质水解、酒和饮料的澄清以及医药治疗等领域[1-3]。

 

　　米曲霉（Aspergillus oryaze）具有丰富的蛋白酶系，能产生酸性、中性和碱性蛋白酶，能耐受较高温度，广泛地应用于食品、医药及饲料等工业中[4]。米曲霉易于固体培养，所产的中性蛋白酶热稳定性高，有利于酶制剂的制作和保存，培养原料来源广泛，价格便宜，用于食品行业和化妆品行业将有广泛的前景[5]。吴继星等[6]研究表明，微生物培养基组成与产酶有极大的相关性。近年来，研究者采用正交设计的方法对培养基组分和培养条件进行优化筛选，并取得一定成效[7]。

 

　　本研究从酿造酱油曲精中分离到一株米曲霉菌株，命名为GN-2，研究了培养条件对米曲霉GN-2产中性蛋白酶的影响，通过正交试验确定了其中4个影响因素的最优组合，为该菌株的开发利用奠定了基础。

 

　　1 材料与方法

 

　　1.1 材料

 

　　菌株来源：米曲霉GN-2，从上海迪发酿造生物制品有限公司优质酱油曲精分离纯化得到。

 

　　PDA培养基：马铃薯200 g/L，蔗糖20 g/L。

 

　　豆粉汁培养基：MgSO4 0.5 g/L，KH2PO4 1.0 g/L，（NH4）2SO4 0.5 g/L，可溶性淀粉20 g/L，黄豆汁1 L。

 

　　发酵培养基：黄豆粉3 g，麸皮12 g，去离子水15 mL，装入250 mL三角瓶搅拌混合均匀。

 

　　1.2 主要试剂和仪器

 

　　主要试剂：干酪素（国药集团化学试剂有限公司）；L-酪氨酸（上海翔军生物科技有限公司）；福林酚试剂（上海分子免疫生化实验室有限公司）。

 

　　主要仪器：YC-W型冷冻恒温振荡器（镇江格瑞生物工程有限公司）；隔水式恒温培养箱（上海博迅实业有限公司医疗设备厂）；TGL-16M型高速台式冷冻离心机（湖南长沙湘仪离心机仪器有限公司）；721E型可见分光光度计（上海光谱仪器有限公司）；DHG-9070型电热恒温鼓风干燥箱（上海精宏实验设备有限公司）；SW-CJ-2FD型双人单面净化工作台（苏州净化设备有限公司）；ALC-114型电子分析天平（北京赛多利仪器有限公司）；pH211C型台式数显酸碱度计（意大利HANNA）。

 

　　1.3 方法

 

　　1.3.1 菌种的分离纯化 挑取2环曲精于100 mL无菌生理盐水中，磁力搅拌器搅拌30 min打散孢子，采用稀释平板涂布法对供试菌种进行分离纯化。培养后，挑取生长快、产孢子致密、表面颜色一致的单菌落，移入PDA斜面培养基，培养后置于4 ℃冰箱保存。

 

　　1.3.2 孢子悬液的制备 挑取斜面培养基米曲霉GN-2孢子两环，于100 mL无菌生理盐水中，磁力搅拌器搅拌30 min打散孢子，取样置于光学显微镜下，利用血球计数板计数，调整孢子密度约为1×106 个/mL。

 

　　1.3.3 发酵条件 取接种孢子悬液2.0 mL于发酵培养基中，30 ℃恒温培养72 h。

 

　　发酵培养基配方为麸皮∶黄豆粉=4∶1，加水量为15 mL，装料量15 g。

 

　　1.3.4 蛋白酶活力测定 参照文献[8]绘制L-酪氨酸标准曲线并测定中性蛋白酶的活力。酶活力单位定义：40 ℃、pH 7.2条件下，每克米曲霉l min水解酪蛋白产生1 μg酪氨酸定义为1个中性蛋白酶活力单位（U/g）。

 

　　1.3.5 发酵条件对米曲霉GN-2产中性蛋白酶的影响

 

　　1）发酵时间。发酵培养基接种后，分别在24、36、48、60、72 h取样，测定酶活力。

 

　　2）培养基组分。在总量不变前提下，控制发酵培养基中麸皮与黄豆粉的比例分别为1∶4、2∶3、1∶1、3∶2和4∶1，灭菌后接种培养，取样测定酶活力。

 

　　3）培养基加水量。发酵培养基中分别加水10、15、20、25、30 mL，其他发酵条件不变，灭菌后接种培养，取样测定酶活力。

 

　　4）温度。将接种后的发酵培养基分别置于20、25、30、35、40 ℃培养72 h，取样测定酶活力。

 

　　5）接种量。发酵培养基中加水量分别为14.5、14.0、13.5、13.0、12.5 mL，灭菌后分别接入0.5、1.0、1.5、2.0和2.5 mL孢子悬液，培养后取样测定酶活力。

 

　　6）培养基起始pH。在发酵培养基中分别加入适量的1 mol/L HCl或NaOH溶液，调整后使培养料的pH分别为5.0、6.0、7.0、8.0、9.0，灭菌接种后培养，取样测定酶活力。

 

　　7）无机盐。以15 mL下列无机盐溶液：0.05% MgSO4·7H2O、0.1%K2HPO4、0.2%KNO3、0.001%FeSO4·7H2O和0.02%（NH4）2SO4，代替发酵培养基中的去离子水，灭菌接种后培养，取样测定酶活力。

 

　　以上各试验每个处理3次重复。

 

　　8）发酵条件的正交试验。根据单因素试验筛选结果，选择培养时间、培养基组分（麸皮∶豆粉）、加水量、培养温度4个因素进行发酵条件的正交试验，按照L9（34）设计4因素3水平试验，9个组合，3次重复，优化发酵条件。正交试验因素和水平如表1所示。

 

　　1.3.6 粗酶液的制备 准确称取固体发酵样品5 g于25 mL，pH 7.2的0.5 mol/L磷酸缓冲液中，搅拌均匀后于40 ℃恒温振荡锅中，100 r/min浸提30 min。浸提液过滤后所得滤液即为粗酶液，用于后期测定。

 

　　1.4 数据处理与分析

 

　　采用Excel 2003和SPSS 15.0软件对数据进行单因素方差分析，差异显著性分析采用多重比较法（LSD），数据为平均值±标准差。

 

　　2 结果与分析

 

　　2.1 酪氨酸标准曲线的绘制

 

　　在波长680 nm处，酪氨酸浓度在10～80 mg/L范围内线性关系良好，其回归方程为y=0.092 9x+0.015 8，R2=0.991 5。标准曲线如图1所示。

 

　　2.2 发酵时间对产酶的影响

 

　　图2结果表明，在试验时间范围内，米曲霉GN-2菌株产中性蛋白酶活力呈先升高后降低的变化规律。当发酵时间为60 h时，中性蛋白酶酶活力达到最高值，为（244.1±8.93） U/g。之后继续培养，中性蛋白酶活力降低。

 

　　2.3 培养基组分对产酶的影响

 

　　图3结果表明，发酵培养基中麸皮与黄豆粉的比例对米曲霉GN-2产中性蛋白酶有明显影响。麸皮所占比例越大，米曲霉GN-2产中性蛋白酶的酶活力越高。当麸皮∶黄豆粉=4∶1时，酶活力达到最大值，为（538.6±12.21） U/g。这可能与麸皮原料对米曲霉产中性蛋白酶的诱导作用有关。

 

　　2.4 培养基加水量对产酶的影响

 

　　由图4可以看出，培养基加水量对米曲霉GN-2产中性蛋白酶有明显影响。在本试验条件下，产酶最适加水量为10 mL，且随着培养基加水量的增加，中性蛋白酶酶活力逐渐下降。可能一方面是由于培养基含水量过高，菌丝体前期徒长，形成孢子的时间延长，使中性蛋白酶产量下降；另一方面，培养基含水量过高致使培养基的透气性下降，氧气供给不足，使菌体生长不良，产酶量也下降。

 

　　2.5 温度对产酶的影响

 

　　由图5可以看出，温度对米曲霉的产酶能力有较大的影响。25 ℃以下，菌体生长缓慢，产酶量较少。温度高于30 ℃时，产酶量迅速下降。培养温度为25、30 ℃时，酶活力较高。当培养温度为25 ℃时，酶活力达到最高值，为（635.6±16.31） U/g。当培养温度为40 ℃时，可能由于固体发酵料中心热量不能及时扩散，导致烧曲现象，以至酶活力降到最低点，约为最高值的4.57%。

 

　　2.6 接种量对产酶的影响

 

　　表2结果表明，接种量可影响米曲霉GN-2产中性蛋白酶的活力。随着接种量的增加，米曲霉产酶能力呈先增强后减弱的趋势；当接种量为2.0 mL时，中性蛋白酶酶活力最高，达到（656.3±16.64） U/g。可能是因为接种量过小时，菌体生长缓慢，发酵迟缓；接种量过大时，则因菌体生长过快导致营养和氧气缺乏，从而影响酶的产生[3]。

 

　　2.7 培养基起始pH对产酶的影响

 

　　表3结果表明，培养基起始pH对米曲霉产中性蛋白酶有一定影响。随着培养基起始pH的增大，中性蛋白酶酶活力呈先升高后降低的变化趋势；pH 为6.0时，酶活力最高，达到（589.4±15.22） U/g。pH为7.0时，酶活力下降到（461.5±13.85） U/g。当pH为9.0时，酶活力降低到最小值，为（315.9±11.76） U/g。

 

　　2.8 无机盐对产酶的影响

 

　　由表4可知，无机盐对米曲霉产中性蛋白酶也有影响，Mg2+、K+、NH4+对产酶有促进作用，Fe2+对产酶有明显的抑制作用。当无机盐为0.02%（NH4）2SO4溶液时，中性蛋白酶酶活力最高，达到（859.6±16.34） U/g。

 

　　2.9 发酵条件的正交试验结果

 

　　在单因素试验的基础上，采用正交试验优化培养基中各组分的配比与培养条件。由表5可知，试验条件下优化水平的最佳组合为A1B3C3D3，米曲霉GN-2产中性蛋白酶的最优培养基配方与培养条件为培养基组分麸皮∶豆粉为4∶1、培养温度25 ℃、加水量20 mL、培养时间72 h。极差分析可知，各因子对酶活力影响大小顺序为培养温度、培养基组分、培养时间、加水量。方差分析（表6）表明，培养温度对产酶量的影响显著，而发酵培养基组分、培养时间以及加水量对产酶量的影响不显著。按照最佳组合试验得到的酶活力为1 016.9 U/g。